Nghiên cứu xây dựng phương pháp phát hiện ký sinh trùng trichinella bằng kỹ thuật tiêu cơ

Y Học TP. Hồ Chí Minh * Tập 17 * Phụ bản của Số 1 * 2013<br /> <br /> Nghiên cứu Y học<br /> <br /> NGHIÊN CỨU XÂY DỰNG PHƯƠNG PHÁP PHÁT HIỆN<br /> KÝ SINH TRÙNG TRICHINELLA BẰNG KỸ THUẬT TIÊU CƠ<br /> Nguyễn Tiến Dũng*, Dương Thị Hân*<br /> <br /> TÓM TẮT<br /> Mục tiêu nghiên cứu: Nghiên cứu này nhằm mục đích xây dựng và đánh giá quy trình phát hiện<br /> Trichinella trong thịt.<br /> Phương pháp nghiên cứu: Sử dụng kỹ thuật tiêu cơ bằng pepsin và HCl.<br /> Kết quả: Kết quả nghiên cứu cho thấy các yếu tố pH, nhiệt độ, thời gian và nồng độ pepsin trong dịch thủy<br /> phân có ảnh hưởng lớn đến hiệu suất thủy phân và khả năng phát hiện Trichinella. Phương pháp phát hiện<br /> Trichinella bằng kỹ thuật tiêu cơ đã được xây dựng thành công với các đặc điểm kỹ thuật như sau: tỉ lệ giữa khối<br /> lượng mẫu và dịch thủy phân là 1:300; pH của dịch thủy phân là 1,5; nồng độ pepsin trong dịch thủy phân là 6<br /> FIP-U/ml; nhiệt độ cho giai đoạn thủy phân là 35oC, thời gian thủy phân khoảng 25 - 30 phút. Kết quả đánh giá<br /> hiệu lực cho thấy phương pháp được xây dựng có giới hạn phát hiện là 2 ấu trùng Trichinella/50g mẫu thịt, độ<br /> nhạy là 100%, độ đặc hiệu là 100%, độ chính xác là 94,4%, tỉ lệ dương tính giả là 0%, tỉ lệ âm tính giả là 9,1%.<br /> Kết luận: Phương pháp đã xây dựng có các thông số kỹ thuật tương đương với phương pháp của Trung<br /> tâm Ký sinh trùng và Bệnh truyền nhiễm qua đường thực phẩm thuộc Cơ quan Thanh tra thực phẩm Canada<br /> với độ tin cậy 95%. Phương pháp này có thể áp dụng tại các phòng kiểm nghiệm an toàn thực phẩm.<br /> Từ khóa: Ký sinh trùng, pepsin, thịt heo, thủy phân, Trichinella.<br /> <br /> ABSTRACT<br /> <br /> RESEARCH METHODS OF DETECTION<br /> PARASITES TRICHINELLAWITHDIGESTION OF MEAT<br /> Nguyen Tien Dung, Duong Thi Han<br /> * Y Hoc TP. Ho Chi Minh * Vol. 17 - Supplement of No 1 - 2013: 145 - 150<br /> Objective: The objective of this study was developing the method for the detection of Trichinella in pork<br /> Methods: Digestion of meat by enzyme pepsin and hydrochloric acid.<br /> Results: The study results show that several factors affect to analysis process such as pH, temperature, time,<br /> digestive enzyme concentration affect to analysis process. The method for the detection of Trichinella in pork by<br /> the digestion principle has been set up successfully. The new method have the specifications as follows: The rate of<br /> sample volume/hydrolyte volume is 1:300; pH of hydrolyte is 1.5; pepsin concentration in hydrolyte is 6 FIPU/ml; temperature for hydrolysis stage is in 35°C, hydrolysis time is in 25 - 30 minutes. The method validation<br /> results of the set up method show that the limit of detection are 2 Trichinella larvae/50g, sensitivity is 100%,<br /> specificity is 100%, accuracy is 94.1%, false positive rate is 0% and false negative rate is 9.1%.<br /> Conclusions: The effectiveness of set up method for detection of Trichinella in pork is equivalent to the<br /> reference method from Centre for Food-borne and Animal Parasitology of Canadian Food Inspection Agency. The<br /> similarity of the reference method and the set up method is 95% of confidence. This method can be applied at food<br /> laboratory to detect Trichinella in meat.<br /> * Trung tâm Chất lượng Nông lâm thủy sản vùng 4<br /> Tác giả liên lạc: TS Nguyễn Tiến Dũng, ĐT: 0918044558, Email: dungnt.nafi4@mard.gov.vn<br /> <br /> Chuyên Đề Ký Sinh Trùng<br /> <br /> 145<br /> <br /> Nghiên cứu Y học<br /> <br /> Y Học TP. Hồ Chí Minh * Tập 17 * Phụ bản của Số 1 * 2013<br /> <br /> Keywords: Parasite, pepsine, pork, digestion, Trichinella.<br /> <br /> ĐẶT VẤN ĐỀ<br /> Trichinella là ký sinh trùng gây bệnh cho<br /> người và động vật. Bệnh Trichinellosis do<br /> Trichinella gây ra còn được gọi là bệnh sán heo<br /> đã được ghi nhận ở các động vật nuôi nhưng<br /> chúng chiếm tỉ lệ lớn trên heo. Tỉ lệ mắc bệnh<br /> này trên toàn thế giới là gần 10.000 người/năm,<br /> tỉ lệ tử vong khoảng 0,2%. Theo thống kê của Tổ<br /> chức Y tế Thế giới (WHO) thịt heo là nguồn chủ<br /> yếu lây truyền bệnh Trichinellosis cho người(3).<br /> Tại các nước Châu Âu, Mỹ, Canada và một<br /> số nước khác yêu cầu phải kiểm tra Trichinella<br /> trong thịt trước khi đưa ra thị trường tiêu thụ<br /> hoặc xuất khẩu(2). Tại Việt Nam, các nghiên cứu<br /> về Trichinella trên thực phẩm còn rất ít, chưa<br /> xây dựng được phương pháp đủ độ nhạy và<br /> độ tin cậy để phân tích ký sinh trùng này<br /> trong thực phẩm. Vì vậy việc nghiên cứu xây<br /> dựng qui trình phát hiện Trichinella trong thực<br /> phẩm là cần thiết.<br /> <br /> Mục tiêu nghiên cứu<br /> Nghiên cứu này nhằm xác định các yêu cầu<br /> kỹ thuật để xây dựng phương pháp phát hiện<br /> ký sinh trùng Trichinella trong thịt bằng kỹ thuật<br /> tiêu cơ kết hợp khuấy từ. Đánh giá hiệu lực qui<br /> trình đã xây dựng để xác định các thông số kỹ<br /> thuật của phương pháp như: giới hạn phát hiện,<br /> độ chính xác, độ đặc hiệu, độ nhạy, tỉ lệ âm tính<br /> giả, tỉ lệ dương tính giả, đồng thời xác định<br /> phạm vi và điều kiện áp dụng của phương<br /> pháp.<br /> <br /> ĐỐI TƯỢNG - PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU<br /> Đối tượng nghiên cứu<br /> Dòng ký sinh trùng sử dụng trong nghiên<br /> cứu: Dòng Trichinella spiralis được cung cấp bởi<br /> Trung tâm Ký sinh trùng động vật và Bệnh<br /> truyền nhiễm qua đường thực phẩm (Centre for<br /> Food-borne and Animal Parasitology), thuộc Cơ<br /> quan Thanh tra thực phẩm của Canada<br /> (Canadian Food Inspection Agency). Ấu trùng<br /> T. spiralis được giữ trong mẫu thịt viên.<br /> <br /> 146<br /> <br /> Mẫu sử dụng trong nghiên cứu: là thịt heo<br /> tươi.<br /> <br /> Phương pháp nghiên cứu<br /> Chuẩn bị mẫu và dịch thủy phân<br /> Chuẩn bị dung dịch thủy phân: Dùng HCl 37%<br /> để chuẩn bị các dung dịch thủy phân có pH là 1;<br /> 1,25; 1,5; 1,75; 2. Làm nóng các dung dịch đến<br /> nhiệt độ thủy phân xác định, thêm pepsinvào để<br /> được nồng độ pepsin trong các dung dịch thủy<br /> phânlà 6; 8; 10 FIP-U/ml.<br /> Chuẩn bị mẫu: Lấy 50g mẫu (hoặc một lượng<br /> mẫu xác định) cho vào máy xay, xay nhuyễn<br /> mẫu trong 5-10 phút, nếu cần thiết có thể cho<br /> một ít dịch thủy phân đã chuẩn bị vào mẫu để<br /> dễ xay nhuyễn.<br /> <br /> Thủy phân mẫu<br /> Chuyển mẫu đã xay nhuyễn vào cốc thủy<br /> tinh có dung tích 3 lít chứa hỗn hợp thủy phân<br /> (3.2.1). Rửa sạch lồng và nắp máy bằng dịch<br /> thủy phân để lấy toàn bộ phần thịt còn sót lại.<br /> Đậy cốc thủy phân bằng giấy nhôm, đặt cốc lên<br /> bếp khuấy từ, giữ ở các nhiệt độ khảo sát là:<br /> 30±1; 35±1; 40±1; 45±10C, bếp được đặt trong tủ<br /> ấm có cùng nhiệt trên, điều chỉnh tốc độ khuấy<br /> để đảm bảo dịch thủy phân phải tạo thành một<br /> xoáy sâu mà không bị bắn ra ngoài(4). Tiến hành<br /> thủy phân trong 30 phút để thịt được thủy phân<br /> hoàn toàn. Dịch sau thủy phân được cho qua<br /> rây lọc có đường kính lỗ rây là 180µm để vào<br /> bình lắng thứ nhất có dung tích 2 lít, rửa rây lọc<br /> 2-3 lần bằng nước ấm, toàn bộ dịch rửa cũng<br /> được cho vào bình lắng. Quá trình thủy phân<br /> đạt yêu cầu nếu hiệu suất thủy phân lớn hơn<br /> 95%(2).<br /> Lắng mẫu<br /> Dịch thủy phân trong bình lắng thứ nhất<br /> được để yên trong 30 phút(6). Lấy nhanh khoảng<br /> 125ml phần lắng từ bình lắng thứ nhất vào bình<br /> lắng thứ hai có thể tích 500ml, thêm nước ấm<br /> đến đầy bình. Để yên dịch trong bình lắng thứ<br /> hai ít nhất 10 phút(6). Lấy nhanh khoảng 22-27ml<br /> phần lắng từ bình lắng thứ hai ra đĩa petri<br /> <br /> Chuyên Đề Ký Sinh Trùng<br /> <br /> Y Học TP. Hồ Chí Minh * Tập 17 * Phụ bản của Số 1 * 2013<br /> đường kính 90mm có chia ô, để yên dịch lắng<br /> trong đĩa petri khoảng 10 phút sau đó quan sát<br /> và đếm ấu trùng Trichinella.<br /> <br /> Xác định kết quả Trichinellacủa mẫu dưới<br /> kính hiển vi soi nổi<br /> Đĩa petri chứa dịch mẫu lắng được kiểm tra<br /> bằng kính hiển vi soi nổi ở độ phóng đại 15-20<br /> lần. Ấu trùng Trichinella có thể xuất hiện ở dạng<br /> cuộn khi lạnh, di động nhiều hơn khi nóng,<br /> hoặc hình chữ C khi chết. Trong một số trường<br /> hợp ấu trùng Trichinella vẫn còn nằm trong kén.<br /> Trong trường hợp nghi ngờ, ấu trùng phải được<br /> quan sát ở độ phóng đại cao hơn.<br /> Đánh giá hiệu lực để xác định các thông số kỹ<br /> thuật của phương pháp<br /> Chuẩn bị mẫu gây nhiễm: Lấy 5g mẫu chuẩn<br /> đã xác định mật độ Trichinella trộn với 45g thịt<br /> heo đã được kiểm tra và khẳng định âm tính với<br /> ký sinh trùng này. Tiến hành phân tích mẫu<br /> theo các bước của quy trình đã xây dựng.<br /> Xác định giới hạn phát hiện (Limit of detection LOD)<br /> Mẫu chuẩn bị cho quá trình xác định giới<br /> hạn phát hiện có mật độ Trichinella như sau: 1-2;<br /> 2-3; 3-4 ấu trùng Trichinella/50g. Chuẩn bị 6 mẫu<br /> cho mỗi mật độ gây nhiễm(7). Giá trị LOD được<br /> xác định theo hướng dẫn của ISO 16140:2003(7).<br /> + Xác định giá trị ước lượng tới hạn (Level<br /> criteria - LC)(7): từ kết quả phát hiện Trichinella ở<br /> các lần lặp lại với các mật độ gây nhiễm khác<br /> nhau như trên, xác định tỷ lệ phát hiện n/6. Giá<br /> trị ước lượng tới hạn là mật độ ký sinh trùng<br /> trong mẫu mà tại đó cho tỷ lệ phát hiện tương<br /> đương 50% (có tỷ lệ phát hiện trong khoảng 2/6<br /> – 4/6). Từ giá trị ước lượng tới hạn (LC), xác<br /> định giá trị ngưỡng phát hiện (S0) theo biểu thức<br /> sau: S0= LC/1,65. Giá trị LOD (ký sinh trùng/50g<br /> mẫu) được tính như sau:<br /> <br /> LOD <br /> <br /> 3,3  S 0<br />  50<br /> m<br /> <br /> Nghiên cứu Y học<br /> <br /> Xác định các thông số kỹ thuật của phương pháp<br /> Các thông số khác đã được xác định bao<br /> gồm: độ đặc hiệu, độ nhạy, độ chính xác, tỉ lệ<br /> dương tính giả, tỷ lệ âm tính giả(1,7). Quá trình<br /> xác định các thông số kỹ thuật của phương<br /> pháp được thực hiện theo hướng dẫn tại tiêu<br /> chuẩn ISO 16140:2003. Quá trình đánh giá được<br /> thực hiện trên 18 mẫu, trong đó có 7 mẫu không<br /> gây nhiễm Trichinella, 11 mẫu gây nhiễm với mật<br /> độ trung bình là 3 ấu trùng Trichinella/50g mẫu.<br /> <br /> KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN<br /> Nghiên cứu xây dựng phương pháp<br /> Xác định pH tối ưu cho quá trình thủy phân<br /> Khảo sát được tiến hành ở các pH: 1,00; 1,25;<br /> 1,50; 1,75; 2,00. Mẫu được thủy phân ở 45±10C<br /> trong 30 phút với nồng độ enzym là 10 FIPU/ml. Thí nghiệm được lặp lại 10 lần ở mỗi pH<br /> khảo sát. Kết quả khảo sát cho thấy khả năng<br /> thủy phân của pepsin thay đổi theo pH môi<br /> trường: trong khoảng pH 1,00– 1,50 hiệu suất<br /> thủy phân đạt yêu cầu đặt ra của quy trình là ≥<br /> 95% và đạt cực đại là 98,50% tại pH 1,5 (Biểu đồ<br /> 1), dịch lắng đục đều, đồng nhất, không phân<br /> tầng, dễ dàng quan sát dưới kính hiển vi. Tại pH<br /> 1,75 hiệu suất thủy phân đạt yêu cầu đặt ra của<br /> quy trình tuy nhiên dịch sau thủy phân còn<br /> nhiều mảnh, sợi thịt có kích thước lớn gây khó<br /> khăn cho việc phát hiện ấu trùng (Hình 1). Tại<br /> pH 2,0 hiệu suất thủy phân thấp hơn hiệu suất<br /> yêu cầu của quy trình, dịch thủy phân sau khi<br /> lắng phân thành 2 lớp, rất đục không thể quan<br /> sát dưới kính hiển vi. Như vậy pH hoạt động tối<br /> ưu của pepsin trong khoảng 1,0-1,5. Trong<br /> khoảng pH này hầu như không có sự khác biệt<br /> về hiệu suất thủy phân của pepsin cũng như<br /> không ảnh hưởng đến việc đếm kết quả trong<br /> dịch lắng dưới kính hiển vi soi nổi. Do đó để tiết<br /> kiệm chi phí, giảm giá thành cho quá trình phân<br /> tích, giá trị pH 1,50 được chọn là pH tối ưu để<br /> thực hiện phản ứng thủy phân mẫu.<br /> <br /> Trong đó: m là khối lượng mẫu thử nghiệm<br /> (m = 50g).<br /> <br /> Chuyên Đề Ký Sinh Trùng<br /> <br /> 147<br /> <br /> Nghiên cứu Y học<br /> <br /> Ấu<br /> trùng<br /> Trichine<br /> <br /> Y Học TP. Hồ Chí Minh * Tập 17 * Phụ bản của Số 1 * 2013<br /> <br /> Mảnh,<br /> sợi gân<br /> thịt<br /> <br /> ấu trùng. Khả năng thủy phân của pepsin với vỏ<br /> nang collagen của ấu trùng thấp hơn so với các<br /> protein khác của cơ thịt. Do đó pepsin cần phải<br /> có hoạt độ đủ lớn để thủy phân hoàn toàn cơ<br /> thịt mẫu và vỏ nang ấu trùng. (2) Khi tiến hành<br /> phân tích mẫu chuẩn chứa ấu trùng Trichinella<br /> với nồng độ pepsin trong dịch thủy phân dưới 6<br /> FIP-U/ml thì khả năng thủy phân vỏ nang ấu<br /> trùng bắt đầu giảm, một số nang ấu trùng chưa<br /> bị thủy phân hoàn toàn nên ấu trùng còn nằm<br /> trong nang (Hình 2). Do đó nồng độ pepsin<br /> được chọn là 6 FIP-U/ml dịch thủy phân.<br /> <br /> Hình 1. Kết quả quan sát dưới kính hiển<br /> vi sau lắng tại độ phóng đại 40 lần<br /> <br /> Biểu đồ 2. Sự thay đổi hiệu suất thủy phân theo<br /> nồng độ pepsin<br /> Hình 2. Các dạng ấu trùng Trichinella thu được khi<br /> thủy phân với nồng độ pepsin là 6 FIP-U/ml<br /> <br /> Xác định nhiệt độ tối ưu cho giai đoạn thủy<br /> phân mẫu<br /> <br /> Xác định nồng độ pepsin tối ưu cho giai đoạn<br /> thủy phân mẫu<br /> Khảo sát được tiến hành ở pH 1,50, mẫu<br /> được thủy phân ở 45±20C trong 30 phút, nồng<br /> độ enzym trong dịch thủy phân được thay đổi<br /> trong khoảng 6-10 FIP-U/ml. Thí nghiệm được<br /> lặp lại 10 lần tại mỗi nồng độ enzym. Kết quả<br /> khảo sát cho thấy trong khoảng nồng độ pepsin<br /> 6-10 FIP-U/ml hiệu suất thủy phân thay đổi<br /> không đáng kể, đạt khoảng 98%. Kết quả quan<br /> sát dịch sau lắng dưới kính hiển vi đều rất tốt.<br /> Tuy vậy, nghiên cứu này không khảo sát ở<br /> các nồng độ pepsin thấp hơn vì: (1) trong quá<br /> trình thủy phân, pepsin không chỉ thủy phân cơ<br /> thịt của mẫu mà còn thủy phân lớp vỏ nang của<br /> <br /> 148<br /> <br /> Biểu đồ 3. Sự thay đổi hiệu suất thủy phân theo<br /> nhiệt độ thủy phân<br /> Khảo sát được tiến hành ở pH 1,50; nồng độ<br /> pepsin 6 FIP-U/ml, nhiệt độ thủy phân ở các<br /> điểm 30, 35, 40, 45oC; thời gian thủy phân 30<br /> <br /> Chuyên Đề Ký Sinh Trùng<br /> <br /> Y Học TP. Hồ Chí Minh * Tập 17 * Phụ bản của Số 1 * 2013<br /> phút. Thí nghiệm được lặp lại 10 lần tại mỗi<br /> nhiệt độ khảo sát. Kết quả khảo sát cho thấy<br /> trong khoảng 35–45oC hiệu suất thủy phân có sự<br /> khácbiệt không đáng kể, đạt khoảng 97,8–98,0%<br /> (Biểu đồ 3). Trong khoảng nhiệt độ này, hiệu<br /> suất thủy phân cũng ổn định khi thử nghiệm<br /> với các loại thịt khác nhau. Vì vậy để thuận tiện<br /> cho thao tác phân tích và tiết kiệm điện năng gia<br /> nhiệt trong quá trình kiểm nghiệm, nhiệt độ tối<br /> ưu của quá trình thủy phân được chọn là 350C.<br /> Biểu đồ 4. Sự thay đổi hiệu suất thủy phân theo<br /> thời gian<br /> <br /> Xác định thời gian thủy phân tối ưu<br /> Khảo sát được tiến hành với dịch thủy phân<br /> có pH 1,50, nồng độ pepsin 6 FIP-U/ml, quá<br /> trình thủy phân ở 350C trong các khoảng thời<br /> gian 15, 20, 25, 30 phút. Thí nghiệm được lặp lại<br /> 10 lần tại mỗi giá trị thời gian khảo sát. Kết quả<br /> khảo sát cho thấy khi tăng thời gian, hiệu suất<br /> thủy phân tăng dần (Biểu đồ 4). Sau 20 phút,<br /> hiệu suất thủy phân trung bình đạt trên 95%.<br /> Nhưng khi tiến hành thủy phân ở 20 phút, sự<br /> thủy phân không ổn định đối với các loại mẫu<br /> khác nhau, một số mẫu chứa nhiều collagen gân<br /> và lipid có hiệu suất thấp hơn so với yêu cầu.<br /> Khi tăng thời gian thủy phân lên 25 phút và 30<br /> phút, hiệu suất thủy phân đạt yêu cầu với tất cả<br /> các loại mẫu khác nhau. Vì vậy thời gian tốt<br /> nhất cho quá trình thủy phân của qui trình phân<br /> tích Trichinella được xác định là 25-30 phút.<br /> <br /> Đề xuất phương pháp phát hiện ký sinh<br /> trùng Trichinella trong thịt bằng kỹ thuật<br /> tiêu cơ<br /> Trên cơ sở các thông số đã xác định tại 4.1,<br /> quy trình phát hiện ký sinh trùng Trichinella<br /> trong sản phẩm thịt được thiết lập như sau: 50g<br /> mẫu thịt được xay nhuyễn, thủy phân, lắng và<br /> đếm kết quả Trichinella được thực hiện như 3.2.1<br /> đến 3.2.4 với các yêu cầu kỹ thuật của quy trình<br /> như sau: pH dịch thủy phân là 1,5; nồng độ<br /> pepsin trong dịch thủy phân là 6 FIP-U/ml; nhiệt<br /> độ thủy phân là 350C; thời gian thủy phân trong<br /> khoảng 25 - 30 phút.<br /> <br /> Chuyên Đề Ký Sinh Trùng<br /> <br /> Nghiên cứu Y học<br /> <br /> Đánh giá các thông số kỹ thuật của phương<br /> pháp phát hiện Trichinella đã được xây<br /> dựng<br /> Các thông số được đánh giá là: giới hạn phát<br /> hiện, độ chọn lọc, độ đặc hiệu, tỉ lệ dương tính<br /> giả, tỉ lệ âm tính giả(1,7). Các thông số này được<br /> xác định dựa theo ISO 16140:2003.<br /> <br /> Xác định giới hạn phát hiện của phương pháp<br /> Quá trình xác định giới hạn phát hiện của<br /> phương pháp được thực hiện như 3.2.5. Kết quả<br /> phân tích các mẫu đã gây nhiễm như Bảng 1.<br /> Bảng 1. Kết quả khảo sát để xác định LOD của<br /> phương pháp<br /> Mật độ<br /> Số mẫu Số lần cho Tỉ lệ phát<br /> Mẫu Trichinella /50g lặp lại<br /> kết quả hiện dương<br /> mẫu<br /> dương tính<br /> tính<br /> T1<br /> 1<br /> 6<br /> 3/6<br /> 50%<br /> T2<br /> 2<br /> 6<br /> 4/6<br /> 67%<br /> T4<br /> 4<br /> 6<br /> 6/6<br /> 100%<br /> <br /> Từ các kết quả nhận được trên Bảng 1, các<br /> giá trị được xác định như sau: Giá trị ước lượng<br /> tới hạn của phương pháp LC = 1 ấu trùng/50g<br /> mẫu; Giá trị ngưỡng S0 = 0,61; Giới hạn phát hiện<br /> của phương pháp LOD = 2 ấu trùng/50g mẫu.<br /> <br /> Xác định các thông số kỹ thuật của phương<br /> pháp<br /> Các thông số kỹ thuật của phương pháp mới<br /> xây dựng được xác định trên 18 mẫu, trong đó<br /> có 7 mẫu không gây nhiễm Trichinella, 11 mẫu<br /> gây nhiễm với mật độ trung bình là 3 ấu trùng<br /> Trichinella/50g mẫu. Kết quả đánh giá các thông<br /> số được trình bày trong Bảng 2.<br /> Bảng 2. Kết quả xác định các thông số kỹ thuật của<br /> phương pháp<br /> Độ<br /> Thông<br /> Độ đặc<br /> Dương Âm<br /> Độ nhạy<br /> chính<br /> số đánh<br /> hiệu<br /> tính giả tính Kết luận<br /> (%)<br /> xác<br /> giá<br /> (%)<br /> (%) giả (%)<br /> (%)<br /> Phươn<br /> g pháp<br /> 100<br /> 100<br /> 94,4<br /> 9,1<br /> 0<br /> Đạt<br /> tiêu cơ<br /> Yêu<br /> Tham<br /> ≥ 98,0 ≥ 90,1 ≥ 94,4 ≤ 9,6 ≤ 2,0<br /> cầu<br /> chiếu(*)<br /> <br /> (*Tham chiếu theo MMC-Microbiology Methods<br /> Committee, Canada)<br /> <br /> 149<br /> <br />